ИСТИНА |
Войти в систему Регистрация |
|
ИСТИНА ИНХС РАН |
||
Проект направлен на изучение молекулярных механизмов регуляции биосинтеза белка в клетках, тканях и органах млекопитающих. Используя биоинформатический анализ общедоступных, а также самостоятельно полученные данные рибосомного профайлинга, мы выявим и изучим наиболее яркие случаи ткане- и органоспецифичной регуляции трансляции индивидуальных мРНК млекопитающих, а затем применим оригинальные методы доставки in vitro синтезированных транскриптов – репортёрных мРНК – в ткани и органы живых мышей. С помощью инструментов молекулярной и клеточной биологии мы проанализируем, как трансляция разных мРНК в тех или иных типах клеток, культивируемых ex vivo, меняется в зависимости от внешних воздействий, а также изучим динамику этих явлений в режиме реального времени. Искусственно направляя репортёрные мРНК в те или иные внутриклеточные компартменты, мы определим влияние локализации на характер трансляции мРНК с разной структурой 5’- и 3’-нетранслируемых областей, уделив особое внимание таким характеристикам, как эффективность инициации трансляции, выбор стартового кодона, скорость и точность элонгации, особенности терминации и рециклинга. Будет изучено влияние так называемых «ядерных событий» на поведение мРНК в цитоплазме клетки (как отличается трансляция мРНК, прошедшей созревание в ядре, от судьбы аналогичной мРНК, доставляемой непосредственно в цитоплазму). Обнаруженные явления будут изучены на молекулярном уровне с помощью биохимических подходов, а также на уровне клеточных культур и целого организма с применением метода генетического нокаута CRISPR/Cas.
The project is focused on molecular mechanisms of translational control in mammalian cells, tissues and organs. Using bioinformatic analysis of commonly available and self-obtained ribosome profiling data, we will identify and study the most striking cases of a tissue- and organ-specific regulation of individual mRNAs translation, and then apply original delivery methods of in vitro synthesized reporter mRNA transcripts to tissues and organs of living mice. Using molecular and cell biology tools, we will analyze how the translation of different mRNAs in various types of cells, that are cultivated ex vivo, is affected by external stimuli, and we will study dynamics of these phenomena in real time. By artificial targeting of the reporter mRNAs to various intracellular compartments, we will determine the effect of this localization on translation pattern of mRNAs having different 5 'and 3' untranslated regions, paying particular attention to such characteristics as translation initiation efficiency, start codon selection, elongation rate and accuracy, termination and recycling features, etc. We will study also how so-called "nuclear events" affect behavior of mRNA in the cytoplasm (by comparing translation of mRNAs that have undergone maturation in the nucleus with that of a similar mRNA delivered directly to the cytoplasm). The phenomena found will be studied at the molecular level using biochemical approaches, as well as at the level of cell cultures and the whole organism (mouse) using the CRISPR/Cas genetic knockouts.
В результате выполнения проекта мы ожидаем получить и опубликовать результаты, соответствующие лучшему мировому уровню в области изучения механизмов биосинтеза белка. Как ни странно, вопросы тканеспецифичности трансляции изучены очень плохо, а на уровне органов и целого организма – практически не изучены. Мы планируем заполнить этот пробел, найдя и исследовав несколько ярких случаев тканеспецифичной регуляции клеточных мРНК мыши и человека с привлечением новейших методов и технологий. Будут изучены особенности трансляции этих мРНК в ответ на внешние воздействия, при этом особое внимание будет уделено отслеживанию динамики процесса и молекулярных механизмам, которые мы собираемся воспроизвести в том числе биохимически. Вторым принципиально важным результатом будет вывод о влиянии внутриклеточной локализации индивидуальных мРНК на их трансляцию – в частности, в ответ на клеточный стресс. Мы надеемся также получить яркие результаты по третьему «модному» направлению, связанному с изучением влияния «ядерных событий» на судьбу мРНК в цитоплазме. Полученные знания позволят лучше понять механизмы биосинтеза белка в клетках млекопитающих, в том числе человека, что важно для лечения целого ряда заболеваний, связанных с нарушением работы трансляционного аппарата, а также создаёт базу для разработки высокоспецифичных ингибиторов трансляции – в частности, потенциальных противораковых и противовоспалительных препаратов.
У группы имеется впечатляющий научный задел по тематике проекта.
Публикации в рецензируемых журналах, отчёт в РНФ
грант РНФ |
# | Сроки | Название |
1 | 28 марта 2018 г.-15 декабря 2018 г. | Пространственная и временная регуляция биосинтеза белка в клетках млекопитающих |
Результаты этапа: В первый год выполнения проекта была проведена подготовительная работа и получены первые результаты. Была полностью отлажена методика рибосомного профайлинга печени и почки мыши: от изготовления библиотек до бионформатического анализа и визуализации данных (включая картирование, анализ дифференциальной экспрессии, построение метагенных профилей и т.п.) Разработана методика доставки репортёрных мРНК в печень живых мышей и отлажен метод наблюдения за экспрессией трансфицированной мРНК в режиме реального времени, получены результаты по анализу экспрессии сплайсирующихся транскриптов. Получены стабильные клеточные линии клеток человека, экспрессирующие зелёный флуоресцентный белок, слитый с РНК-связывающим белком MS2CP, и подготовлены конструкции, кодирующие варианты люциферазных мРНК с MS2-шпильками в 3’ НТО. Обнаружены новые случаи тканеспецифичной экспрессии генов, кодирующих компоненты трансляционного аппарата. Выявлен новый механизм мРНК-специфичной регуляции трансляции на основе uORF, приводящий к резкому падению уровня трансляции как минимум двух мРНК (MDM2, EIF2D) в условиях гиперосмотического стресса. В совместной работе с лаб. Томаса Стайтца (Йельский университет, США) определена структура интерфейса взаимодействующих факторов рибосомного рециклинга и реинициации трансляции MCT-1 и DENR в гетеродимере. | ||
2 | 1 января 2019 г.-15 декабря 2019 г. | Второй этап |
Результаты этапа: В 2019 году в ходе реализации проекта было показано, что мРНК, содержащая IRES-элемент вируса CrPV, несмотря на свою эффективную трансляцию в условиях классического арсенитного стресса, тем не менее обнаруживается в стресс-гранулах. Антибиотики, способствующие разборке полисом до состояния, когда на мРНК находится в основном по одной-единственной 80S рибосоме в районе стартового кодона, делают невозможным формирование стресс-гранул в клетке под действием классического стрессирующего агента арсенита натрия. Показана релокализация факторов терминации трансляции eRF1 и eRF3, а также факторов реинициации и рибосомного рециклинга eIF2D, MCT-1, DENR и ABCE1 в стресс-гранулы в условиях классического арсенитного стресса. В этих же условиях в клетке резко возрастает эффективность реинициации и частота сквозного прочтения стоп-кодонов. Анализ данных рибосомного профайлинга штаммов дрожжей, нокаутных по генам факторов рециклинга и реинициации eIF2D и MCT-1 (ТМА64 и ТМА20, соответственно), выявил нарушения в трансляции uORF-содержащих мРНК, а также привёл к обнаружению неизвестного ранее артефакта, потенциально затрагивающего сотни генов в библиотеке нокаутных дрожжевых штаммов. В результате обработки данных рибосомного профайлинга печени и почки мыши выявлены мРНК, предположительно демонстрирующие тканеспецифичную трансляцию. | ||
3 | 1 января 2020 г.-15 декабря 2020 г. | Третий этап |
Результаты этапа: | ||
4 | 28 апреля 2021 г.-31 декабря 2021 г. | Первый этап продления |
Результаты этапа: | ||
5 | 1 января 2022 г.-15 декабря 2022 г. | Второй этап продления |
Результаты этапа: Разработана база данных транслируемых рамок в повторяющихся элементах человеческого генома: https://riborepa.autosome.org/, на данный момент содержащая информацию о ~800 рамках с высоким белок-кодирующим потенциалом, относящихся к 37 семействам мобильных элементов. Проведена экспериментальная верификация наличия продуктов трансляции некоторых из найденных рамок Вестерн-блоттингом и иммуноцитохимией. Показано, что ДНК-транспозон TIGGER, ранее считавшийся неактивным (как и все другие ДНК-транспозоны человека), активно продуцирует белок транспозазу в некоторых клеточных линиях человека. Обнаружена тканеспецифичная гетерогенность в экспрессии рамки env эндогенного ретровируса HERV-K. Подготовлены к публикации материалы проекта по анализу транслятома печени мышей, подвергнутых продлевающим жизнь интервенциям. Получены гомозиготные мыши Eif4e1b-/-, нокаутные по гену белка с неизвестной функцией eIF4E1B, который имеет выраженный тканеспецифичный паттерн экспрессии (семенники, ооциты и нейрональные ткани). Мыши, несущие небольшую CRISPR/Cas-индуцированную делецию в обеих хромосомах, приводящую к сбою рамки считывания гена, оказались жизнеспособными. Анализ морфологии не выявил каких-либо явных внешних или внутренних нарушений. Проведены 4 поведенческих теста, которые не дали ярких результатов. Анализ фертильности показал, что мутация в гене Eif4e1b, скорее всего, нарушает фертильность самок, но не самцов. Поддерживается база данных низкомолекулярных ингибиторов эукариотической трансляции EuPSIC: https://eupsic.belozersky.msu.ru/, наращивается объём её содержимого (на данный момент доступна информация о 432 ингибиторах) и функционал. В рамках развития метода мРНК-трансфекции проведён систематический анализ влияния замены уридина на 1-метилпсевдоуридин на активность разных функциональных элементов в мРНК. Показано, что такая замена полностью инактивирует IRES-элементы всех 4 типов, которые можно было бы использовать в мРНК-технологиях. Однако некоторые CITE сохраняют свою активность даже при замене 100% U на m1PsiU. Доведена до написания статьи и отправки в журнал работа по выявлению случаев тканеспецифичных различий в уровне экспрессии генов нескольких трансляционных факторов и аминоацил-тРНК-синтетаз у человека. Доведена до опубликования работа по анализу влияния низкомолекулярных ингибиторов трансляции разных типов на сборку стресс-гранул в условиях окислительного стресса, вызываемого арсенитом натрия. Показано, что рибосом-направленные ингибиторы элонгации особого типа, которые останавливают единственную 80S рибосому в начале кодирующей области, но не мешают всем последующим рибосомам закончить трансляцию и покинуть мРНК (например, харрингтонин, лактимидомицин, Т-2 токсин или пактамицин), вопреки ожиданиям, полностью предотвращают образование стресс-гранул. Выдвинуто предположение, что вхождение мРНК в стресс-гранулы может быть опосредовано специфичными контактами между РНК-связывающими белками и теми участками 40S субчастиц рибосом, находящихся на этих мРНК, которые оказываются недоступными в случае ассоциированных субчастиц. Доведена до опубликования работа, описывающая резкое падение точности и эффективности двух последних стадий трансляционного цикла – терминации и рибосомного рециклинга – при окислительном стрессе, и одновременную релокализацию факторов терминации и рециклинга (eRF1, eRF3, ABCE1, eIF2D, MCT-1 и DENR) в стресс-гранулы. Выдвинуто предположение, что секвестрирование белков в стресс-гранулы (или, в общем случае, в другие клеточные компартменты), приводящее к уменьшению их доступности в цитозоле, является новым механизмом регуляции их активности. |
Для прикрепления результата сначала выберете тип результата (статьи, книги, ...). После чего введите несколько символов в поле поиска прикрепляемого результата, затем выберете один из предложенных и нажмите кнопку "Добавить".