Разработка новых классов препаратов для терапии онкологических и метаболических заболеваний на основе коньюгатов лекарственных препаратов с тканеспецифическими лигандами.НИР

Источник финансирования НИР

грант РНФ

Этапы НИР

# Сроки Название
1 15 сентября 2014 г.-31 декабря 2014 г. Разработка новых классов препаратов для терапии онкологических и метаболических заболеваний на основе коньюгатов лекарственных препаратов с тканеспецифическими лигандами.
Результаты этапа: Основная цель проекта - разработать платформу эффективных и легко масштабируемых биомедицинских подходов и технологий для доставки терапевтических агентов в пораженные ткани и органы. Мы планируем выйти на новый уровень в области получения многофункциональных препаратов с заданными свойствами (селективность, специфичность, токсичность, эффективность). При этом в дальнейшем мы обеспечим простоту и транслируемость в промышленность процесса получения таких препаратов, высокую активность включенных в их состав терапевтических молекул и контроль фармакокинетических и фармакодинамических параметров препаратов. Конкретной задачей проекта является поиск новых потенциальных терапевтических препаратов для лечения рака простаты и метаболических заболеваний печений. Известно, что гепатоциты экспрессируют асиалогликопротеиновые рецепторы (1 000 тыс. рецепторов на одну клетку), распознающие терминальные остатки D-галактозы или N-ацетил-D-галактозамина, в связи с этим направленную доставку терапевтических молекул в этот орган можно осуществить с помощью препаратов, содержащей адресный модуль, представленный галактозосодержащим фрагментом или его аналогом. Было показано, что коньюгаты, содержащие остатки N-ацетилгалактозамина могут быть использованы для адресной доставки siRNA в печень [Delivery materials forsiRNA therapeutics, Nature Materials,12, 967–977 (2013)].Основным барьером для успешного применения таких коньюгатов в клинике является использование большого объема вводимой инъекции. В настоящем проекте нами впервые предлагается использовать лиганды асиалогликопротеинового рецептора для доставки в печень препаратов, регулирующих липидный и углеводный метаболизм в крови. В рамках проекта, на ряду с производными N-ацетилгалактозамина, планируется синтезировать серию новых лигандов асиалогликопротеинов, имеющих большую аффинность по сравнением с описанными аналогами, а следовательно и большую эффективность в случае терапевтического использования коньюгатов. Терапевтический потенциал таких препаратов будет оцениваться в экспериментах in vitro (определение констант связывания с выделенным рецептором, исследование транспорта коньюгатов через клеточную мембрану, функциональный тест на клеточных линиях) и in vivo на адекватных животных моделях.
2 1 января 2015 г.-31 декабря 2015 г. Разработка новых классов препаратов для терапии онкологических и метаболических заболеваний на основе коньюгатов лекарственных препаратов с тканеспецифическими лигандами.
Результаты этапа: Сведения о достигнутых конкретных научных результатах в отчетном году 1. Синтез исходных соединений для получения конъюгатов лекарственных препаратов. Синтезирована серия модифицированных лекарственных молекул (ЛМ) -доксорубицин, паклитаксель, аторвастатин, мевакор - содержащих терминальные фрагменты, обеспечивающие конъюгацию с малыми молекулами (векторами). Впервые синтезирован ряд линкеров, содержащих в своей структуре биодеградируемые (дисульфиды и гидразиды), а также метаболически устойчивые в физиологических условиях фрагменты. В отчете представлены подробные схемы и методики синтеза указанных интермедиатов. Указаны выходы промежуточных продуктов и целевых молекул. Все полученные соединения были охарактеризованы с применением стандартных подходов и процедур аналитической химии. 2. Синтез конъюгатов ЛМ с лигандами асиалогликопротеинового рецептора и простатного специфического мембранного антигена. С использованием методов классической органической химии осуществлен синтез новых (предложенных на основании докинга) соединений-векторов. Впервые проведена конъюгация ЛМ (доксорубицин, паклитаксель, аторвастатин, мевакор, нуклеиновые кислоты и др.) с векторами асиалогликопротеинового рецептора (ASGP-R) и простатного специфического мембранного антигена (PSMA-R). Всего было выделено в индивидуальном виде 6 конъюгатов ЛМ с векторами PSMA и 5 конъюгатов с векторами ASGP-R. 3. Молекулярное моделирование/ оптимизационный in silico скрининг. С использованием метода молекулярного докинга были предложены новые потенциальные PSMA-Rлиганды с оптимальной длиной линкера и свойствами. Было отобрано 4 новых молекулы для проведения сравнительного биологического тестирования. Основной целью компьютерного моделирования являлся дизайн наиболее подходящих (высокая аффинность) малых молекул, выступающих в роли специфических PSMA-Rлигандов (corehead) и линкеров. 4. Физико-химическое исследование коньюгатов. С использованием ЯМР и ИК-спектроскопии, масс-спектрометрии, элементного анализа и в ряде случаев РСА были изучены основные физико-химические характеристики синтезированных лигандов, линкеров и конъюгатов. 5. Стабильность конъюгатов в физиологических условиях. С использованием методов масс-спектрометрии, электронной спектроскопии в УФ и видимой области была оценена устойчивость синтезированных конъюгатов в физиологических условиях. Было показано, что линкеры, содержащие гидразидный фрагмент претерпевают деградацию при рН5.5 в течении 120 минут. Следует отметить, что конъюгаты, содержащие нерасщепляемые линкеры не активны также и в клеточных экспериментах по определению цитотоксичности. 6. Биологический скрининг. Было проведено биологическое тестирование (скрининг) синтезированных конъюгатов с целью оценки их in vitro аффинности по отношению к указанным рецепторам. В качестве контрольных образцов использовали известные и охарактеризованные лиганды, включая N-ацетилгалактозамин, галактоза (для ASGP-R) и уреиды на основе глутаминовой кислоты (для PSMA-R). По результатам биологического тестирования были обнаружены новые высокоактивные конъюгаты, не уступающие по эффективности контрольным образцам. 7. Оценка противоопухолевой активности отобранных конъюгатов на клеточных линиях. Противоопухолевую активность (ингибирование пролиферации, цитотоксичность) отобранных молекул оценивали с использованием стандартного метода МТТ (3-(4,5-диметилтиазол-2-ил)-2,5-дифенил-тетразол бромид). В качестве объекта исследований были выбраны следующие приоритетные клеточные линии: PC3 (рак простаты), LNCap (рак простаты), Huh7 (гепатоцеллюлярная карцинома печени), HepG2 (гепатоцеллюлярная карцинома печени). В результате биологического тестирования были обнаружены соединения-лидеры, показавшие сравнимую с контрольными образцами эффективность. На стадию in vivo тестирования были отобраны наиболее перспективные конъюгаты. 8. Получение и биологическое тестирование конъюгатов PSMA-R с олигонуклеотидами. Был разработан метод синтеза и получены конъюгаты олигонуклеотидов с фрагментом вектором, отвечающим за адресный транспорт через PSMA рецептор следующего строения: FAM-5'-CTCCCTCTCACTCCCCAATACGGAGAGAAGAACGATCATCAATGGCTGAC-3'- Glu-urea-Lys. Была разработана экспресс-система для оценки взаимодействия синтезированных коньюгатов с PSMA-R. При окрашивании клеток PC3, LNCaP, Hek293T и MCF7 в течении 30 минут при комнатной температуре 2 мкМ раствором коньюгата FAM с Glu-urea-Lys доля клеток, флуоресценция которых достоверно превышает сигнал автофлуоресценции составила 62% для линии LNCaP с высоким уровнем экспрессии и 26% - для линии MCF7, являющейся PSMA-положительной. Было изучено специфическое взаимодействие конъюгатов с мишенями в клетке, последовательность олигонуклеотида в конъюгате была выбрана комплементарная U3 РНК. В случае клеточных линий рака предстательной железы LNCaP удалось детектировать структуры, локализующиеся в ядрышке, в котором и находится целевая РНК U3. 9. Получение конъюгатов ASGPR с олигонуклеотидами и их биологическое тестирование. Была получена серия конъюгатов следующего общего строения FAM-5'-CTCCCTCTCACTCCCCAATACGGAGAGAAGAACGATCATCAATGGCTGAC-3'-GalNAc, где GalNAc - тривалентное производное N-ацетилгалактозы, отвечающее за адресный транспорт в гепатоциты. Впервые была продемонстрирована индукция ASGP рецептора биотином. Данное наблюдение будет более детально исследовано на следующих этапах работ проекта.
3 1 января 2016 г.-31 декабря 2016 г. Разработка новых классов препаратов для терапии онкологических и метаболических заболеваний на основе коньюгатов лекарственных препаратов с тканеспецифическими лигандами.
Результаты этапа: Оптимизирован синтез новых лигандов асиалогликопротеинового рецептора (ASGPR). Наилучшие показатели аффинности по отношению к рецептору показал лиганд разветвленного строения с тремя остатками аллилгликозида-N-ацетилгалактозамина (KD = 0.76 нМ). Также предложен новый лиганд ASGPR неуглеводной природы, содержащий хинолиновый фрагмент (KD = 327 нМ). Аффинность обоих соединений превосходит показатель для эндогенного лиганда N-ацетилгалактозамина (KD = 448 мкМ). Оптимизирована процедура получения ковалентных конъюгатов доксорубицина, метотрексата и паклитакселя с производными N-ацетилгалактозамина и N-ацетилглюкозамина с использованием различных синтетических подходов. Для паклитаксела была проведена оптимизация условий этерификации 5-гексиновой кислотой с получением производных, замещенных в положение 7-ОН и в фенилизосериновый фрагмент исходной структуры. На примере метотрексата предложен метод, в котором молекула противоопухолевого препарата выступает в качестве платформы для построения разветвленных гликоконъюгированных систем. Осуществлено взаимодействие аторвастатина с лигандами ASGPR на основе производных N-ацетилгалактозамина, содержащими концевую аминогруппу. Образование конъюгата аторвастатина было зафиксировано методом ВЭЖХ/МС. Все полученные конъюгаты терапевтических молекул оказались стабильными в физиологических условиях. Для последующих экспериментов in vivo на крысах Wistar с трансплантированным подкожно альвеолярным слизистым раком печени РС-1, были получены конъюгаты N-ацетилгалактозамина и N-ацетилглюкозамина с флуоресцентным красителем Sulfo-Cy5. Показано, что конъюгаты на основе N-ацетилгалактозамина проникают в клетки рака печени на порядок лучше в сравнении с производными N-ацетилглюкозамина. Синтезированные конъюгаты не проявили токсичности in vivo. Предложена модель ранней диагностики рака печени in vivo с использованием лигандов ASGPR. Было показано, что добавление биотина и/или хлорида кальция в клеточную среду при культивации линии гепатоцеллюлярной карциномы Huh7 со сниженной экспрессией ASGPR способствует увеличению количества рецепторов на поверхности, что ведет к повышенному проникновению лигандов внутрь гепатоцитов. На примере конъюгата лиганда ASGPR(7) с модельной анти-AHA1 миРНК было показано, что добавление хлорида кальция и/или биотина способствует проникновению конъюгата в клетки Huh7 и наблюдается падение уровня экспрессии гена-мишени в 3-5 раз при одинаковой концентрации миРНК. Получена серия адресных конъюгатов доксорубицина и лигандов ПСМА, выявлено соединение-лидер (19) с pH расщепляемым линкером. Методом ВЭЖХ/МС был оценен период полураспада конъюгата при pH 5.0 и 7.4, значения составили 1.25 ч (pH 5.0) и 50 ч (pH 7.4), что подтверждает возможность расщепления целевых конъюгатов в эндосомах с высвобождением лекарственного препарата доксорубицин в свободном виде при рецептор-опосредованным эндоцитозом. Синтезирована серия конъюгатов паклитаксела, модифицированного остатками 5-гексиновой кислоты (в положение 7-ОН и в фенилизосериновый фрагмент) с различными лигандами ПСМА. Исследована цитотоксичность полученных конъюгатов на клеточных линиях рака предстательной железы LNCaP и PC3, изучена зависимость «структура-активность» цитотоксического действия конъюгатов. Цитотоксическая активность конъюгата с амидной связью между линекром и ПСМА-лигандом (IC50 = 25 нМ) на порядок выше, чем у конъюгата с сочленением через фрагмент мочевины (IC50 = 1670 нМ). Продемонстрировано предпочтительное сочленение фрагментов-линкеров и ПСМА-лигандов в структуре конъюгата через амидную связь по сравнению с сочленением через фрагмент мочевины. Все лиганды и конъюгаты в данной работе были выделены в индивидуальном виде и охарактеризованы методами спектроскопии 1H и 13С ЯМР , масс-спектрометрии высокого разрешения и ВЭЖХ/МС. Была изучена экспрессия ПСМА в клеточных линиях рака предстательной железы LNCaP, PC3, MCF-7 и HEK-293 методом проточной флуориметрии с использованием ранее синтезированного флуоресцентного конъюгата (Lys-urea-Glu-Cy5), способного визуализировать ПСМА. Была обнаружена флуоресценция большей части клеток линии LNCaP (89%), большей части клеток MCF-7 (65%) и незначительный сигнал флуоресценции для линий PC3 (1%) и HEK-293 (13%). Показано, что конъюгат Glu-urea-Lys-Cy5 накапливается в цитоплазме клеток LNCaP, чего не происходит на клеточной линии PC3. Впервые показано, что клеточная линия MCF-7, также содержит биомолекулы, способные селективно взаимодействовать с лигандами ПСМА. Методом лентивирусной трансфекция клеточной линии PC3 была получена клеточная линия PC3-PIP (ПСМА+). С использованием клеточной линии PC3-PIP получена ксенографтная мышиная модель рака предстательной железы, на которой проводилось исследование активности конъюгата-лидера in vivo. Было выявлено наличие противоопухолевого эффекта адресного конъюгата доксорубицина по сравнению с контрольной группой. Однако выявленный эффект оказался меньше в сравнении со свободным препаратом доксорубицин, что объясняется недостаточной экспрессией ПСМА в культуре клеток PC3-PIP. Для ряда полученных конъюгатов паклитаксела была исследована цитотоксичность на клеточных линиях LNCaP (ПСМА+) и PC3 (ПСМА-). Конъюгаты с амидным сочленением показали цитотоксичность (IC50 = 25 нМ и 86 нМ), близкую к соответствующим значениям препарата паклитаксел, однако проявили низкую избирательность к ПСМА-экспрессирующей клеточной линии. Конъюгат с мочевинным сочленением показал высокую избирательность по отношению к ПСМА-положительной клеточной линии, что перспективно для дальнейших in vivo исследований. Таким образом, установлено соотношение «структура конъюгата – активность» для конъюгатов паклитаксела с лигандами ПСМА. Синтезированы смысловые цепи ASHA-T XXX-g-g-Af-u-Gf-a-Af-g-Uf-g-Cf-a-Gf-a-Uf-u-Af-g-Uf-invdT и Luc-T XXX-c-u-Uf-a-Cf-g-Cf-u-Gf-a-Gf-u-Af-c-Uf-u-Cf-g-Af-invdT, содержащая на 5’-конце три фрагмента гидроксипролинола, модифицированного 5-гексиновой кислотой. Последующее присоединение азидо производного, содержащее три остатка N-ацетилгалактозамина, позволило ввести в состав конъюгата сразу девять остатков N-ацетилгалактозамина. Были синтезированы конъюгаты коротких интерферирующих РНК, ингибирующих экспрессию терапевтически значимого белка ApoB. Было показано, что уже при 30 нМ концентрации РНК наблюдается эффективное ингибирование экспрессии АроВ в свежевыделенных гепатоцитах мышей. Было отмечено, что добавлении избытка лиганда или хелатирующего агента (EGTA) резко снижает эфекктивность ингибирования. Были синтезированы короткие интерферирующие РНК, направленные на мРНК транстиретина. Среди синтезированных структур, были выбрана структуры-лидеры. Получены конъюгаты миРНК и 2’-OMeРНК (ядрышковая последовательность комплементарная к U3 РНК) с лигандами ПСМА на основе уреида лизина и глутаминовой кислоты. Состав конъюгатов подтвержден методом масс-спектрометрии, индивидуальность с помощью ВЭЖХ. Впервые методом флуоресцентной микроскопии показано, что конъюгат лигандов ПСМА с 2’-OMeРНК к U3 РНК может быть использован для визуализации ядрышек клеток рака предстательной железы. Данный подход универсален и представляет интерес для создания адресных конъюгатов для визуализации in vitro. Впервые продемонстрирован метод адресной доставки миРНК к мРНК AHA1 в культуре LNCaP. Был продемонстрирован 95% нокдаун мРНК AHA1 после инкубации культуры LNCaP с конъюгатом лиганда ПСМА рецептора с миРНК в концентрации 8 мкМ. Данный подход открывает возможность адресной доставки терапевтической миРНК в клетки рака предстательной железы. В рамках выполнения проекта РНФ в Ломоносовском корпусе МГУ имени М.В. Ломоносова открыта новая лаборатория "Тканеспецифических лигандов". В лаборатории могут быть реализованы полноценные исследования от дизайна структуры молекулы до отбора кандидатов предклинических испытаний для лечения социально-значимых болезней.

Прикрепленные к НИР результаты

Для прикрепления результата сначала выберете тип результата (статьи, книги, ...). После чего введите несколько символов в поле поиска прикрепляемого результата, затем выберете один из предложенных и нажмите кнопку "Добавить".