Исследование молекулярных основ селективности взаимодействия пептидных блокаторов с калиевыми каналамиНИР

Study of the molecular basis of selectivity of peptide interaction with potassium channels blockers

Источник финансирования НИР

грант РНФ

Этапы НИР

# Сроки Название
1 14 июля 2014 г.-31 декабря 2014 г. Исследование молекулярных основ селективности взаимодействия пептидных блокаторов с калиевыми каналами
Результаты этапа: 1) Построены структурные модели калиевых потенциал-зависимых каналов Kv1.1, Kv1.2 и Kv1.6, а также модели комплексов этих каналов и канала Kv1.3 с рядом высокоактивных пептидных блокаторов, включая агитоксин 2 (AgTx2), хонготоксин (HgTx), калиотоксин (KTx), маргатоксин (MgTx), токсин OSK1 и недавно обнаруженный нами в яде скорпиона M.eupeus блокатор с условным обозначением М1 (всего более 20 моделей). Проведен расчет молекулярной динамики комплексов в водном растворе с имитацией мембранного окружения для определения преимущественных вариантов расположения блокатора составе комплекса. Проведен анализ различных вариантов ориентации блокаторов относительно каналов, причем сканирование угла поворота блокатора в диапазоне от -45 до +45 градусов выполнено впервые. Обнаружены три возможных ориентации AgTx2 в комплексе с каналами Kv1.1, Kv1.2, Kv1.3 и Kv1.6, которые отличаются углом поворота относительно оси канала. Проведен расчет взаимодействий токсинов с каналами для всех возможных ориентаций. Определены остатки блокаторов, образующие интерфейс взаимодействия с каналами Kv1.1, Kv1.2, Kv1.3 и Kv1.6. Предложен и обоснован ряд аминокислотных замен (8 вариантов) для повышения аффинности и селективности взаимодействия агитоксина с различными каналами. 2) Разработана биоинженерная клеточная система для поиска и изучения блокаторов потенциал-чувствительного калиевого канала Kv1.2 на основе сконструированного гибридного рецептора KcsA-Kv1.2, содержащего лиганд-связывающий сайт Kv1.2, и флуоресцентно-меченого лиганда - хонготоксина (R-HgTx). Для разработки системы были решены задачи оптимизации экспрессии гибрида KcsA-Kv1.2 в клетках E.coli c целью повышения общего уровня биосинтеза целевого белка и уровня его встраивания в цитоплазматическую мембрану клетки. Оптимальная экспрессия достигнута путем подбора экспрессионного штамма и условий культивирования клеток. Выбор флуоресцентно-меченого лиганда осуществлен среди фракций родамин-меченых пептидных блокаторов - R-HgTx и марготоксина (R-MgTx), рецептор-связывающая активность которых была предварительно проверена на гибридных рецепторах KcsA-Kv1.1 и KcsA-Kv1.3. По сравнению с исходными пептидами (рекомбинантным маргатоксином и химически-синтезированным хонготоксином) аффинность меченых пептидов к гибридным рецепторам KcsA-Kv1.Х (Х=1, 2 и 3) оказалась довольно низкой, что связано с эффектом введения флуоресцентной метки по одному из остатков лизина и, как следствие, нарушением связей лиганд-рецептор. С целью улучшения аффинности флуоресцентно-меченого лиганда запланировано создание рекомбинантного R-HgTx, меченого по N-концу флуоресцентным белком. В опытах по конкурентному ингибированию связывания R-HgTx немечеными лигандами Kv1.2 канала - маргатоксином, хонготоксином, OSK1 и ChTx, было продемонстрировано специфичное и обратимое связывание R-HgTx с рецептором KcsA-Kv1.2 на мембране сферопластов. Для AgTx2, не имеющего сродства к Kv1.2, связывание с KcsA-Kv1.2 отсутствовало. Полученные данные свидетельствует о применимости сконструированной биоинженерной клеточной системы для изучения пептидных лигандов Kv1.2 канала и поиска новых пептидных блокаторов в ядах скорпионов. 3) Разработанный вариант биоинженерной клеточной системы на основе рецептора KcsA-Kv1.2 применен для поиска новых лигандов канала Kv1.2 в ядах скорпионов. Показано, что в цельных ядах скорпионов Mesobuthus eupeus и Buthacus arenicola присутствуют компоненты, способные вытеснять R-HgTx из комплексов с рецепторами KcsA-Kv1.2. В цельном яде скорпиона Euscorpus mingrelicus наличия таких компонентов не выявлено. При разделении цельного яда M.eupeus с помощью эксклюзионной хроматографии получены три «грубых» фракции, в одной из которых обнаружена целевая активность. Методом МАЛДИ-масс-спектрометрии установлено, что в активную фракцию яда входят пептиды с молекулярными массами от 2 до 9 кДа. Эта фракция была разделена с помощью обращенно-фазовой высокоэффективной жидкостной хроматографии (ОФ-ВЭЖХ) на 40 субфракций, содержащих индивидуальные компоненты яда M. eupeus. В настоящее время ведется исследование способности этих субфракций связываться с рецептором KcsA-Kv1.2, вытесняя из комплексов R-HgTx. Это исследование планируется завершить до конца декабря 2014 г и приступить к идентификации активных пептидов- лигандов Kv1.2. 4) Проведено конструирование двух вариантов гибридных рецепторов KcsA-КСа3.1 путем встраивания лиганд-связывающего сайта канала КСа3.1 в соответствующий участок бактериального канала KcsA. Конструирование проведено на основе выравнивания аминокислотных последовательностей порового домена KCa3.1, KcsA и других Kv1-каналов с помощью программы CLUSTALW и последующего анализа вторичных структур гибридов программой Psipred. Обе гибридные последовательности сохраняли вторичную структуру поровой петли, в том числе, альфа-спиральную укладку P-спирали. Фрагмент S5-P линкера канала KCa3.1, перенесенный в соответствующий участок KcsA, содержал а.о., являющиеся основными молекулярными детерминантами связывания канала с токсинами - OSK1, мауротоксином, ChTx. В штамме E.coli Lemo21(DE3) был достигнут высокий уровень экспрессии гибридных белков KcsA-КСа3.1 (-1 и -2). Проведен анализ образования комплексов между сферопластами, экспрессирующими KcsA-КСа3.1 (-1 и -2), и флуоресцентно-мечеными лигандами. В этих экспериментах использовали родамин-меченый мауротоксин (R-MTX) и гибридный флуоресцентный белок eGFP-OSK1. Высокая активность eGFP-OSK1 была предварительно подтверждена на рецепторах KcsA-Kv1.1 и KcsA-Kv1.3 (см. ниже). В случае обоих флуоресцентных лигандов связывания со сферопластами, экспрессирующими KcsA-КСа3.1 (-1 и -2) обнаружено не было. Возможными причинами этого результата являются: низкая аффинность блокатора OSK1 к каналу Kv1.2 (Kd=225 нМ), а также низкая аффинность R-MTX (фракции R-MTX не показали ожидаемой активности и при связывании с рецептором KcsA-Kv1.2). Для решения возникших проблем начаты повторный синтез родамин-меченых производных МТХ, а также создание МТХ, меченого флуоресцентным белком по N-концу с использованием технологии, успешно разработанной в данном проекте. Цель этих работ - создание высоко активного флуоресцентно-меченого лиганда к каналу КСа3.1. С этими новыми лигандами планируется проведение работ, направленных на улучшение встраивания KcsA-KCa3.1в мембрану клеток подобно тому, как это было сделано нами для KcsA-Kv1.2. Если потребуется, предусмотрено введение в состав гибридов KcsA-KCa3.1 дополнительных молекулярных детерминант связывания с блокаторами, расположенных в линкере P-S6 канала KCa3.1. Таким образом, текущими задачами в плане разработки системы детекции лигандов канала КСа3.1 остается создание высокоаффинного флуоресцентно-меченого лиганда к этому каналу, и получение достоверного связывания этого лиганда с гибридными рецепторами KcsA-KCa3.1. 5) Впервые сконструированы и получены функционально-активные генокодируемые флуоресцентные белки - eGFP-OSK1 и TagRFP-AgTx2, высокоаффинные блокаторы потенциал-чувствительных калиевых каналов. Выбор флуоресцентных белков (eGFP и TagRFP) был основан на их спектральных свойствах - высоком квантовом выходе флуоресценции, устойчивости к фотовыцветанию, а также на стабильности мономерной формы этих белков. В качестве пептидных блокаторов были использованы OSK1 и AgTx2, имеющие широкий спектр активности в отношении Kv1-каналов. Специально подобранные линкеры, соединяющие два «модуля» – флуоресцентный белок и блокатор каналов, являются неструктурированными гибкими аминокислотными последовательностями, не ограничивающими взаимодействие пептидного лиганда с белком-рецептором. Химерные флуоресцентные блокаторы были экспрессированы в клетках E.coli и выделены с высоким выходом - 10-100 мг/л культуры. Правильность сворачивания и активность химерных белков подтверждены наличием характеристичной флуоресценции и способности связываться на клеточных системах, экспрессирующих в мембране KcsA-Kv1.1 и KcsA-Kv1.3. Анализ выявил наличие высокоафинного связывания гибридных лигандов со значениями констант диссоциации (Кd) для комплексов RFP-AgTx2 с KcsA-Kv1.1 и KcsA-Kv1.3 соответственно 4,1 и 0,6 нМ. Для комплексов eGFP-OSK1 с KcsA-Kv1.1 и KcsA-Kv1.3, величины Kd составили соответственно 37 и 4,5 нМ. Таким образом, использование флуоресцирующих белков в качестве флуоресцентной метки блокаторов Kv-каналов позволяет получить высокаффинные флуоресцентные зонды и преодолеть основную трудность химического мечения органическими красителями - малые полезные выходы реакции (10-20%) из-за наличия нескольких сайтов, по которым происходит мечение пептида. Установлено, что немеченые рекомбинантные AgTx2 и OSK1 вытесняют RFP-AgTx2 и eGFP-OSK1 из комплексов с KcsA-Kv1.1 и KcsA-Kv1.3, что подтверждает специфичность и обратимость связывания гибридных флуоресцирующих лигандов. При измерениях методом конкурентного ингибирования связывания кажущиеся константы диссоциации AgTx2 и OSK1 оказываются сравнимыми с константами, полученными альтернативными методами на полноразмерных эукариотических каналах Kv1.1 и Kv1.3. Таким образом, нами впервые получены высокоаффинные гибридные лиганды каналов Kv1, меченые флуоресцентными белками. Простота и надежность получения таких гибридов, возможность достоверных количественных измерений с их использованием открывают новые перспективы в исследованиях каналов Kv1.
2 1 января 2015 г.-31 декабря 2015 г. Исследование молекулярных основ селективности взаимодействия пептидных блокаторов с калиевыми каналами
Результаты этапа: Построены структурные модели комплексов канала KCa3.1 с токсинами ChTx и MTx, а также модели комплексов KCa2.3 с ScTx и MTx . Проведен расчет молекулярной динамики, рассчитаны и описаны интерфейсы взаимодействия в данных комплексах. Построены структурные модели комплексов канала Kv1.2 с рядом пептидных лигандов из яда M. eupeus: MeuKTx1 (αKTx8.6), MeuKTx3 (αKTx3.13) и MeuTx3B (αKTx16.4). Выявлены ключевые остатки, ответственные за связывание с каналом Kv1.2. Продолжена оптимизация биоинженерной системы для поиска и изучения пептидных блокаторов канала Kv1.2 на основе гибридного рецептора KcsA-Kv1.2. На основе eGFP сконструированы и получены рекомбинантные генокодируемые флуоресцентные лиганды канала Kv1.2 - eGFP-HgTx, eGFP-MgTx, eGFP-MTX. Рецептор-связывающая активность генокодируемых флуоресцентных лигандов была изучена и подтверждена с помощью флуоресцентной системы детекции на гибридных каналах KcsA-Kv1.3 и KcsA-Kv1.2. Построены структурные модели комплексов каналов Kv1.1, Kv1.2, Kv1.3 и Kv1.6 с пептидом M1. Предложены 10 возможных мутаций для повышения селективности связывания с тем или иным типом канала. На основе молекулярного моделирования комплексов блокатора AgTx2 с Kv1- каналами были выявлены сходства и различия во взаимодействии AgTx2 с каналами Kv1.1, Kv1.3 и Kv1.6 и идентифицированы а.к. остатки, определяющие наиболее существенные взаимодействия. На основе этого анализа был предложен ряд аминокислотных замен AgTx2 способных изменить аффинность блокатора к целевым Kv1- каналам. Методами биоинженерии были получены восемь мутантов AgTx2 с одной или двумя заменами в а.к. последовательности, и их активность была охарактеризована на панели гибридных каналов KcsA-Kv1.1, KcsA-Kv1.3 и KcsA-Kv1.6. Выявлены мутации, повышающих селективность связывания блокатора с определенным типом каналов. С помощью разработанной нами экспрессионной системы получен рекомбинантный сциллатоксин. На основе сциллотоксина (ScTx) и зеленого флуоресцентного белка eGFP сконструирован и впервые получен рекомбинантный генокодируемый флуоресцентный лиганд eGFP-ScTx, предназначенный для использования в качестве флуоресцентного зонда в биоинженерной системе. С целью разработки биоинженерной системы для изучения блокаторов KCa2.3 каналов были сконструированы два генетических варианта гибридных каналов KcsA-KCa2.3-1 и KcsA-KCa2.3-2, содержащие молекулярные детерминанты связывания с блокаторами, определенные по данным молекулярного моделирования. На основе харибдотоксина (ChTx) и зеленого флуоресцентного белка eGFP сконструированы и впервые получены рекомбинантные генокодируемые флуоресцентные лиганды eGFP-ChTx и eGFP-MTX, предназначенные для использования в качестве флуоресцентных зондов в биоинженерной системе на основе каналов KcsA-KCa3.1. Были сконструированы новые генетические варианты гибридных каналов KcsA-KCa3.1-1(Y82V) и KcsA-KCa3.1-2 (Y82V), содержащие дополнительную важную молекулярную детерминанту связывания с пептидными блокаторами 82V. Показано, что, несмотря на высокий уровень биосинтеза каналов KcsA-KCa3.1 в клетках бактерий, их мембранная презентация происходит неэффективно. С применением клеточной тест-системы на основе KcsA-Kv1.3 проведено тестирование ядов двух скорпионов (Androctonus amoreuxi и Buthacus arenicola), выявившее присутствие в них лигандов Kv1.3-канала. Проведено разделение ядов A. amoreuxi и B. аrenicola на фракции и в результате тестирования обнаружено около 20 активных фракций, большинство из которых (с учетом ограниченных данных о токсинах из этих ядов) могут оказаться новыми высокоактивными блокаторами Кv1-каналов.
3 1 января 2016 г.-31 декабря 2016 г. Исследование молекулярных основ селективности взаимодействия пептидных блокаторов с калиевыми каналами
Результаты этапа: Методом моделирования по гомологии был построен калиевый канал входящего выпрямления Kir1.1, а с помощью метода молекулярного докинга получены модели его комплексов с диким типом и мутантными формами токсина тертиапина (TPN). Два кластера решений докинга с оптимальными энергетическими характеристиками (с проникновением в селективный фильтр остатков His12 или Lys17 TPN) были использованы для построения комплексов, впоследствии уравновешенных с помощью метода молекулярной динамики. Согласно проведенному анализу контактов и рассчитанной энергии связывания дикий тип TPN связывается с порой канала Kir1.1 за счет Lys17, мутантная форма TPN-Q – за счет His12. Анализ комплексов Kir1.1 с мутантами тертиапина K17A и R7A показал значительное снижение аффинности связывания токсинов, что доказывает важную роль остатков К17 и R7 в образовании комплексов TPN с каналом Kir1.1. Моделирование комплексов калиевого канала Kir1.1 с диким типом и мутантными формами токсина TPN позволило получить информацию о структуре образуемых комплексов, а также о конкретных контактах, возникающих между каналом и пептидами. Проведена разработка биоинженерной системы для исследования связывания лигандов с малоизученным калиевым каналом Kir1.1. Сконструированы гибридные белки KcsA-rKir1.1 и оптимизирована их экспрессия в мембране E.coli. Методами биоинженерии созданы генетические конструкции, направляющие биосинтез в E.coli рекомбинантного пептидного блокатора канала rKir1.1 - тертиапина (TPN-KQ) и его флуоресцентно-меченого производного - GFP-TPN-KQ. Разработаны процедуры выделения и ренатурации TPN-KQ и GFP-TPN-KQ. Показано, что флуоресцентно-меченный лиганд TPN-Q-ATTO-633 имеет сродство к участку Р-петли (FYPPDNRT) канала Kir1.1 крысы и связывается со сферопластами, экспрессирующими каналы KcsA-rKir1.1. Обнаружено, что ни TPN-KQ, ни TPN-LQ не способны конкурировать с TPN-Q-ATTO-633 и вытеснять его из мест связывания с гибридным каналом KcsA-rKir1.1. Этот результат может свидетельствовать о различных модах взаимодействия TPN-Q и TPN-LQ/TPN-KQ с каналом и требует дальнейшей разработки пары флуоресцентный лиганд/немеченый лиганд для совершенствования биоинженерной системы изучения блокаторов Kir1.1 каналов. С целью увеличения уровня мембранной презентации каналов KcsA-Kv1.2 и KcsA-КСа3.1 были проведены опыты по культивированию этих каналов в более эффективных по сравнению с BL21(DE3) экспрессионных штаммах E.coli фирмы NEB (UK), таких как T7 Express Iq, T7 Express Lys/Iq, а также Lemo 21(DE3). Проведенные исследования показали, что в нашем случае применение штаммов фирмы NEB не повышает общий уровень экспрессии гибридных каналов и не облегчает их встраивание в мембрану с образованием функционально активных тетрамеров. Разработан прямой метод определения мембранной локализации гибридных калиевых каналов в бактериях. Метод позволяет решать важную, но трудно контролируемую задачу определения эффективности встраивания гибридных каналов на основе KcsA в цитоплазматическую мембрану E.coli. В основу биоинженерного метода положена идея конструирования флуоресцирующих каналов путем присоединения к С-концу гибридного канала флуоресцентного белка RFP. После оптимизации длины линкера, соединяющего С-конец гибридного канала и RFP, и условий экспрессии флуоресцентных каналов, была получена белковая конструкция KcsA-Kv1.3-RFP, которая эффективно синтезируется в клетках BL21(DE3), ярко флуоресцирует, встраивается в мембрану и обеспечивает связывание eGFP-AgTx2 с константой диссоциации комплекса (Кd=2.4 нМ) сравнимой с Kd на немеченых KcsA-Kv1.3-каналах (Кd=1.5 нМ). Разработка аналогичной конструкции для канала KcsA-KCa3.1 позволила установить, что уровень мембранной локализации канала KcsA-KCa3.1-RFP при прочих равных условиях существенно ниже, чем в случае канала KcsA-Kv1.3-RFP. Полученные результаты свидетельствует о перспективности разработанного подхода для оптимизации экспрессии и контроля за мембранным встраиванием новых каналов на основе KcsA. Для сферопластов, экспрессирующих флуоресцентные гибридные каналы, разработана цитометрическая методика измерения связывания GFP-меченых блокаторов и количественного анализа их конкурентного вытеснения исследуемыми соединениями. Написан программный скрипт (https://anaconda.org/sharonov/fcsgroupfit), позволяющий в автоматическом режиме проводить вычисления для всего массива измеренных данных и рассчитывать константы диссоциации комплексов флуоресцентно-меченых лигандов, а также константы диссоциации немеченных лигандов при вытеснении ими меченых. Методом проточной цитометрии в автоматизированном режиме были измерены константы диссоциации для флуоресцентных и немеченных токсинов AgTx2, ChTx с каналом RFP-KcsA-Kv1.3, которые совпадают в пределах погрешности с константами, полученными ранее методом конфокальной микроскопии. Адаптация биоинженерной клеточной системы для анализа с помощью проточной цитометрии существенно расширяет потенциал её применения, в частности, для высокопроизводительного скрининга соединений – потенциальных блокаторов Kv-каналов. Методами молекулярного моделирования построены комплексы каналов Kcsa Kv1.1, Kv1.2, Kv1.3 и Kv1.6 с 12 мутантными формами пептидного блокатора калиевых каналов AgTx2 (R31G, S7K, K19S, H34K, S11G, T9G, T9G/G10L, N30A/K32A, S11G/H34K, S11G/K19S, K19S/H34K, T9L/G10L/H34K). Для этих комплексов проведен расчет молекулярной динамики по специально разработанным протоколам и детально определена совокупность контактов на интерфейсах взаимодействия с описанием их типа (стэкинг-взаимодействия, гидрофобные контакты, водородные и ионные связи) и силы взаимодействий. Проведено сопоставление наблюдаемых взаимодействий в комплексах с экспериментально измеренными константами связывания. Обнаружено, что введение точечных мутаций в одной части комплекса может вызывать существенные компенсаторные изменения взаимодействий в отдаленных от мутации областях комплексов, что способно снижать/изменять ожидаемый эффект точечных мутаций. Предложены и обоснованы 12 новых вариантов модификации природных блокаторов для улучшения их аффинности и/или селективности к поровому домену каналов Kv1.х (х=1-3, 6). С учетом результатов молекулярного моделирования осуществлен рациональный дизайн четырех мутантных форм AgTx2, содержащих две или три точечные аминокислотные замены. Рекомбинантные мутантные пептиды были получены методом сайт-направленного мутагенеза с помощью разработанной нами биоинженерной системы продукции пептидных токсинов. На сферопластах, экспрессирующих каналы KcsA-Kv1.х, проведено изучение аффинности мутантных пептидов к поровым доменам этих каналов. Установлено, что по сравнению с исходным AgTx2 мутанты AgTx2(S11G/K19S) и AgTx2(K19S/H34K) характеризуются значительным усилением селективности связывания с поровым доменом канала Kv1.3 по сравнению с Kv1.1 при сохранении или даже усилении сродства к Kv1.3. Эти мутанты AgTx2 могут быть использованы в дальнейшем для разработки высокоаффинного и высокоселективного блокатора Kv1.3 канала, перспективного для медицинского применения. Используя для идентификации активных фракций биоинженерные клеточные системы на основе каналов KcsA-Kv1.х, из яда скорпиона B. arenicola в индивидуальном состоянии получено 4 активных компонента, проявляющих активность лигандов порового домена Kv1.х-каналов. Были идентифицированы молекулярные массы этих пептидов, которые находятся в диапазоне 3-4 кДа. Для одного компонента была установлена частичная N-концевая аминокислотная последовательность. В транскриптоме скорпиона Orthochirus scrobiculosus была обнаружена последовательность кДНК нового потенциального токсина. Было произведено фракционирование яда O. scrobiculosus, среди компонентов которого удалось идентифицировать искомый токсин (OSK3). Аминокислотная последовательность OSK3 была подтверждена N-концевой ступенчатой деградацией по Эдману. Произведено электрофизиологическое тестирование нового токсина на панели калиевых каналов, построены кривые «доза-ответ» для Kv1.2, Kv1.3 и Kv1.6, а также рассчитаны значения IC50.

Прикрепленные к НИР результаты

Для прикрепления результата сначала выберете тип результата (статьи, книги, ...). После чего введите несколько символов в поле поиска прикрепляемого результата, затем выберете один из предложенных и нажмите кнопку "Добавить".